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pCold-SUMO-10His原核蛋白表达试剂盒

简要描述:

pCold-SUMO-10His原核蛋白表达试剂盒公司正在出售的产品:狗肺成纤维细胞 重组小鼠GFRAL蛋白 假结核棒杆菌PCR检测试剂盒 大鼠髓系细胞触发受体-1(TREM-1)试剂盒 ELISA 性蛋白活性比色法检测试剂盒 产酮古洛糖菌 糖基转移8结构域1抗体

更新时间:2024-01-12

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pCold-SUMO-10His原核蛋白表达试剂盒

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pCold-SUMO-10His原核蛋白表达试剂盒

1 kit

A-PJ1109

描述:本试剂盒所包含的原核表达载体(pCold-SUMO-10His)是在 pCold-SUMO 载体基础上改造而成,

该载体启动子(CS Promoter)来源于南极嗜冷细菌,在低温下(15 度)才能启动蛋白的表达。低温下细菌生长缓慢,使得蛋白合成速度减慢,从而最大限度的提高了蛋白正确折叠的几率,提高了蛋白可溶性表达,增强了活性蛋白的表达比率。该表达系统所包含的 SUMO tag 可以极大地提高小分子量蛋白的表达量,而且进一步提高了蛋白的可溶表达几率。同时,TEE 信号肽可增强冷启动子调控下目的蛋白的高表达。
改进后的 pCold-SUMO-10His 载体,其 SUMO 蛋白标签含有 10 个组氨标签(10His tag),使其结合 Ni-NTA 的能力更强。与较早版本的 pCold-SUMO 表达系统相比,pCold-SUMO-10His 表达系统在保留了原有统的蛋白可溶性能生产能力、高特异性剪切能力的情况下,对 Ni-NTA 结合能力的得到明显提高。其对 Ni-NTA 结合能力的提高,

QQ截图20240110094643.jpg在以下三个方面改善了生产重组蛋白的性能:

(1)提高了粗蛋白样品中目标蛋白的捕获能力,从而提高纯化产量;

(2)在蛋白纯化过程中可以
使用更高浓度的咪唑进行漂洗,去杂蛋白的能力明显提升,从而获得更高纯度的重组蛋白;

(3)在重组蛋白酶切去除 SUMO标签后,利用 Ni-NTA 去除 SUMO 标签更为,获得纯度更高的无标签目标蛋白。
关于宿主菌的使用:本试剂盒配备了两种宿主表达菌感受态细胞,Lyophilized Arctic (DE3)感受态和 LyophilizedBL21(DE3) Chaprone 感受态,两种感受态均为冻干品形式可长期保存在-20℃,效价无明显下降(2~10X10e5 cfu/μg)。
通常在质粒载体的构建完成,并测序验证后,可将重组质粒转入该感受态进行蛋白表达。该宿主菌仅为蛋白表达生产用,不可以进行载体构建和质粒的提取制备。由于 pCold-SUMO 系统的高可溶性表达特性,在大多数情况下重组蛋白在 LyophilizedArctic (DE3)感受态即可获得理想的可溶表达,因此实验请选用 Lyophilized Arctic (DE3)感受态宿主菌。

在 LyophilizedArctic (DE3)感受态宿主菌可溶表达效果不理想的情况下,再选用操作相对复杂的、带有辅助折叠伴侣分子的 LyophilizedBL21(DE3)Chaprone 宿主菌,该系统可获得最佳的可溶表达。除此外,pCold-SUMO 系统在常规 BL21(DE3)、BL21(DE3)plys等宿主菌内均可获得可观的可溶性表达。
关于蛋白酶的使用:试剂盒配备了 SUMO 蛋白酶(酵母来源,也称为 UIP 蛋白酶)和 rTEV 蛋白酶,在第一步载体构建过程中需要评估、考虑两个蛋白酶的使用策略。SUMO 蛋白酶识别蛋白结构,切割活性高、酶切,对于需要去除 Tag的重组蛋白其是。个别情况下 SUMO 标签的结构会受到 C 端重组目标蛋白的影响,使得 SUMO 蛋白酶对重组融合蛋白的切割效率降低、甚至是无效,此时再选用 rTEV 蛋白酶进行酶切。由于 rTEV 蛋白酶识别氨基酸序列,个别重组融合蛋白会包埋识别序列,因此也会导致蛋白酶切效率下降。由于重组融合蛋白结构的无法预测性,因此在实验过程中两种蛋白酶的酶切均需要测试。无论如何,通常 SUMO 蛋白酶具有更高的效率。本试剂盒配备的 SUMO 蛋白酶可以识别 SUMO标签结构(SDSEVNQEAKPEVKPEVKPETHINLKVSDGSSEIFFKIKKTTPLRRLMEAFAKRQGKEMDSLRFLYDGIRIQADQTPEDLDMEDNDIIEAHREQIGG)切割位点位于 QIGG 之后。SUMO 蛋白酶含有双 His 标签,保证了 SUMO 蛋白酶高亲力的结合 Ni-NTA,以最大限度的去除 SUMO 蛋白酶(分子量约 26kD)。rTEV 蛋白酶可以识别 SUMO 标签后面的 Glu-AsnLeu-Tyr-Phe-Gln-Gly (ENLYFQG)氨基酸序列,并在识别位点 Gln-Gly(QG)之间进行切割,从而去除 SUMO 标签。rTEV 蛋白酶含有 6XHis 标签(分子量约 30kD),可使用 Ni-NTA 纯化介质去除。
本试剂盒配备的 pCold-SUMO-10His-Positive Plasmid 为蛋白表达阳性质粒,该质粒含有 43kD 的目标蛋白,其与SUMO 标签(19kD)融合后分子量约为 62kD。该表达质粒在 Arctic (DE3)中即可获得良好的表达。其可以仅可做为表达、酶切实验的阳性对照品。



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PCR基本步骤及注意事项?

一、实验原理

PCR是体外人工选择性扩增DNA的一种方法,它类似于生物体内DNA的复制。在生物体内DNA复制需要模板、引物、DNA聚合酶、DNA解旋酶、 dNTPs;而体外PCR反应同样需要类似的成分,有模板、引物、PCR Buffer、Taq酶、dNTPs。其中引物是人工设计的特定序列,实现对特定位置的扩增;PCR Buffer提供一个反应的缓冲环境;反应过程同生物体内一样,DNA双链打开,引物结合模板,延伸形成新链。而这些过程在生物体内靠DNA解旋酶解链,而在体外在通过控制反应温度实现的。如常用94℃变性模板DNA打开双链,在退火温度处引物结合到模板上,最后在72℃完成延伸,并反复重复此过程即可实现对特定片段DNA的大量扩增。到第三循环开始才产生出和靶DNA区段相同的DNA分子,进一步循环地产生出靶DNA区段的指数加倍。

在扩增后期,由于产物积累,使原来呈指数扩增的反应变成平坦的曲线,产物不再随循环数而明显上升,这称为平台效应。平台期(Plateau)会使原先由于错配而产生的低浓度非特异性产物继续大量扩增,达到较高水平。因此,应适当调节循环次数,在平台期前结束反应, 减少非特异性产物。到达平台期(Plateau)所需循环次数取决于样品中模板的拷贝。

二、主要的成分

1.模板可以是多种形式,主要包括基因组DNA、质粒DNA、携带病毒的基因组DNA、PCR产物,cDNA等,但不能为RNA。对于不同类型的模板,其主要不同在于预变性的时间以及模板的量。一般对于大的基因组DNA预变性时间10min足够,质粒DNA2min、携带病毒的基因组DNA预变性2min、PCR产物预变性2min即可。

注意cDNA为单链DNA,但仍可做PCR的模板,只不过在第一轮循环时只有一个引物结合,合成另一条链。从第二轮开始,两个引物均与特异位点结合,从而实现了与常规PCR的接轨。而同作为单链的RNA却不能进行PCR扩增,原因就在于实现PCR反应的是DNA聚合酶,只能特意识别DNA链。

2.对于模版的量来说,一般25ul体系DNA的质量为50—100ng。对于基因组DNA由于其结构比较复杂,提取的浓度也往往比较大,为防止浓度过大对PCR造成影响,故需对提取的DNA进行梯度稀释。否则浓度过高则可能会引起非特异性扩增。对于质粒及PCR产物由于其结构简单,且提取浓度一般较低,则无需稀释。

PCR实验中应该注意的问题有哪些?

没有ct值

检测结果遇到没有Ct值情况,排查是否有以下问题:

1、循环数不够(一般不超过45循环,不仅背景值提高,定量也不准);

2、PCR程序设置错误,检测荧光信号的步骤有误。一般SG法采用72℃延伸时采集,TaqMan法则一般在退火结束时或延伸时采集信号,另外荧光采集是否选中;

3、引物或探针降解。可通过PAGE电泳检测引物和探针是否降解;

4、模板量可能降解或上样量不足(不超过500ng,根据试剂盒说明书即可), 对未知浓度的样本应从系列稀释样本的最高浓度做起;如果发生模板降解,应考虑样本准备中杂质的引入及反复冻融的情况,建议将模板样本小量分装储备,避免反复冻融;

5、引物探针是否合适(尤其是引物跨越内含子,以确保扩增基因组DNA;上下游引物Tm值超过4℃以上也会影响扩增)。

ct值过晚

在相对定量中, Ct值一般控制在15—25之间比较好,如果在绝对定量中, 对低拷贝数的样品,Ct值会增大, 但是一般不宜超过40循环, 否则定量不准确。

因此,判断Ct值出现过晚是否属于非正常情况, 需要根据具体实验设计和目的进行。

1、扩增效率低。引物之间或者引物和探针的比例不合适, 需要进行优化;引物或探针设计不合理, 需要重新设计;

2、PCR程序不合适, 改用三步法进行反应, 或者优化退火/延伸温度, 可以适当降低退火温度; 退火/延伸时间短(可以在推荐的时间条件下延长10s);

3、MgCl2浓度不合适,增加镁离子浓度等。PCR各种反应成分的降解或加样量的不足;

4、PCR产物太长。PCR产物设计超过500bp;

5、模板中存在抑制物。用高纯度模板进行PCR检测或将模板进行稀释。

公司正在出售的产品:

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